- 締切済み
コラーゲン
portlandorの回答
- portlandor
- ベストアンサー率50% (1/2)
元の文献の雑誌名，出版年，ページは何ですか。
関連するQ&A
- pH指示薬の変色と電離定数
試験管10本に0.025% BTB 1.0mlと、リン酸塩溶液1.0mlを加える。 水を加えて12mlとし、駒込ピペットで0.2M水酸化ナトリウムまたは塩酸を加えながら完全な黄色から緑色を経て完全な青色にいたる溶液列を作成し、水で一定の体積(20ml)とする。 それぞれの溶液について615nmの吸光度とpHを測定する。 pHと吸光度の関係を方眼紙に「BTBの電離指数」としてグラフにする。 という実験をしました。この実験について、 1．実験によって得られたグラフの様子をBTBの分子と光の吸光度とを関連ずけて説明する。 2.BTBのpkBTBの値をグラフから求める。 グラフは中和滴定曲線のような曲線になったのですが、どうやって求めればいいのかわかりません。 長々と書き連ねてしまって申し訳ないです。
- ベストアンサー
- 化学
- 検量線の作り方
0.05mol硫酸銅溶液2.00mlを、メスピペットを用いて100mlのメスフラスコにとり、これに6molアンモニア水を加えて振り混ぜる。さらにイオン交換水を加えて100mlとする。この発色液の吸光度を比色計で測定する。引き続き、硫酸銅溶液を4.00,6.00,8.00,10.00mlずつメスピペットでとり、まったく同様に発色させて吸光度を測定する。 さらに、銅濃度ゼロつまりアンモニア水とイオン交換水の場合もその吸光度を測定する。 と、いう手順で実験しました。 得られた結果は 硫酸銅 吸光度 2.00ml 0.05 4.00 0.12 6.00 0.18 8.00 0.25 10.00 0.31 イオン交換水 0 アンモニア水 0 となりました。 縦軸を吸光度、横軸を銅濃度として検量線を作りたいのですが、作り方がわかりません。 どなたか教えてもらえませんか。お願いします。
- ベストアンサー
- 化学
- 吸光度を測定する実験をしたのですが、悩んでます。
先日、吸光度を測定する実験をしたのですが、そのとき試料の溶液が少し濁っていました。多分溶かしすぎだと思うのですが それが原因で値が狂ってしまったのです。僕自身の考えでは「濁っている＝光をほとんど吸収してしまう」のでつまり溶液の向こう側から来る光があまり目に届かない、溶液を通過すると殆ど吸収されて通過してくる光は強度がかなり小さい、と考えました。たぶん違ってると思うのですが、なぜ濁っていたことで、吸光度が大きくなったのか自分ではこれぐらいしか思いつきませんでした。どなたかご教授お願いします(泣)
- ベストアンサー
- 化学
- 酵素によるでんぷんの分解
実験１ １．０．２％可溶性でんぷん溶液を９ｍｌとり、３０度に温める ２．アミラーゼ１ｍｌ加えかくはんし、この時間をｔ＝０とする。 ３．０．３ｍｌを(1)～(6)のルゴール液を入れた試験管に５分ごとに加えていく。 室温に戻し、吸光度を測定 実験２ 実験１と同じで温度を４５度に 実験３ １．アミラーゼ１ｍｌを９０度で１０分間温める ２．でんぷん溶液を９ｍｌずついれ、かくはんする。この時間をｔ＝０に ３．０．３ｍｌを(1)～(3)のルゴール液の入った試験管に１０分ごとに加えていく。吸光度を測定 ヨードでんぷん反応の示す青紫色（６６０ｎｍにおける吸光度）を測定してその減少速度を酵素反応速度とする。 実験１，２で、吸光度を測定したのですが３０度のほうが吸光度が低く、４５度のときのほうが吸光度が低くなりました。30度と45度で15度あがるとアミラーゼ活性はどのように変化するのでしょうか？実験が成功しているのか失敗なのかがわからないので教えてください、お願いします
- ベストアンサー
- 化学
- 硫酸アンモニウム鉄(Ⅱ)溶液の調整
鉄の吸光光度分析で、硫酸アンモニウム鉄(Ⅱ)で標準溶液原液の調整をしました。 その際、1Lのメスフラスコを使用して0.702gの硫酸アンモニウム鉄(Ⅱ)を溶解させ、蒸留水で標線に合わせました。 なぜ、1Lのメスフラスコを使用したのですか？ 500mlで0.351gではダメなのですか？
- ベストアンサー
- 化学
- 吸光度から・・・
今回実験でラクトアルブミンの吸光度を測定しました。 測定条件は以下の通りです。 ・200mlの牛乳から中和上清164mlを得た。その中和上清のうち30mlを用いてラクトアルブミン(0.18g)を塩析させて取り出した。 ・実験により得られたラクトアルブミン(0.18g・湿重量)を蒸留水で2mlにメスアップ。 ・その2mlのなかから0.2mlとり、5mlに希釈した。（２５倍希釈） ・その5mlをA280で吸光度を測定した。 ・測定結果は ピーク時の吸光度 280.8nm = 0.279 でした。 ※実験書によると、280nm付近でピーク吸光度が１の時のタンパク質の濃度を1mg／mlであると仮定して、タンパク質の定量をせよ。 とあります。 このような条件で、中和上清30mlあたりのラクトアルブミンをどのように計算したらよいのかいまいち解りません。 ただ単に、吸光度より、タンパク質濃度0.279mg／mlだから・・・・×30？？？ でも何かおかしいですし・・・ それとも希釈したから、0.279mg×25 で、さらに吸光度に使用したのは溶液2mlの中の0.2mlだから ×10・・・ 0.279mg×25×10で中和上清30mlあたりのラクトアルブミン量？？？ 考えていると余計に訳解らなくなってしまって・・・ どなたか教えてください。 ヨロシクお願いします。
- 締切済み
- 化学
- 酵素によるでんぷんの分解について
実験１ １．０．２％可溶性でんぷん溶液を９ｍｌとり、３０度に温める ２．アミラーゼ１ｍｌ加えかくはんし、この時間をｔ＝０とする。 ３．０．３ｍｌを(1)～(6)のルゴール液を入れた試験管に５分ごとに加えていく。 室内に放置し、吸光度を測定 実験２ 実験１と同じで温度を４５度に 実験３ １．アミラーゼ１ｍｌを９０度で１０分間温める ２．でんぷん溶液を９ｍｌずついれ、かくはんする。この時間をｔ＝０に ３．０．３ｍｌを(1)～(3)のルゴール液の入った試験管に１０分ごとに加えていく。吸光度を測定 ヨードでんぷん反応の示す青紫色（６６０ｎｍにおける吸光度）を測定してその減少速度を酵素反応速度とする。 以上の実験なんですが、うちの班は上手く吸光度が下がりませんでした。（あがったりさがったり） これは何が作用されたのでしょうか？ また、３０度だとアミラーゼが活発になる１歩手前、４５度だとちょっといきすぎ。 これはどっちの温度がベストになるのでしょうか？ ４５度の方が失活される前でまだ生き残ってる確率が高いと考えたのですが。。。 ちょっと急ぎです・・・ご教授お願い致しますm(_ _)mm(_ _)m
- ベストアンサー
- 化学
- DNAとタンパク質の混合物の吸光度曲線について
実験でDNA溶液とタンパク質溶液（BSA）の吸光度を測定しました。 それぞれ吸光度曲線は260nmと280nmでピークをむかえるのですが、レポートで「このDNA溶液とBSA溶液を等量混ぜて吸収スペクトルを書いたらどのようになるか」ということを根拠を含めて説明しなければなりません。 今、手元にあるデータは紫外部（240～300nm）の吸光度とそれをもとに描いた吸光度曲線のみです。 どんな些細なことでもいいので教えていただけないでしょうか？
- ベストアンサー
- 化学
補足
説明不足ですみませんでした。 JOURNAL OF ANALYTICAL CHEMISTRY Vol.61 NO.4 2006 の320ページにある、Photometric Determination of Collagen という記事です。お願いいたします。